Cite this article as:
Stepanov S. A. The Populus nervirubens Alb. sclerenchyma: genesis of cells. Izvestiya of Saratov University. New series. Series: Earth Sciences, 2019, vol. 17, iss. 2, pp. 133-?. DOI: https://doi.org/10.18500/1682-1637-2019-2-3-133-170
The Populus nervirubens Alb. sclerenchyma: genesis of cells
The paper presents a brief overview of information on the Genesis of plant sclerenchyma cells, indicating the role of leaves and lateral buds in the induction of their differentiation, some phytohormones, the position of cells in the body. For anatomical studies, samples of the stem and trunk of Populus nervirubens Alb. were used different age: one and seven years. In stem annual escape poplar cells sklerenhima presented extradinarily fibers and sclereids located generally solitary cow in the parenchyma under phelloderma or near the fibers. In the cortex of the stem of the seven-year-old P. nervirubens shoot, soft cell bast cell complexes alternate with groups of solid bast fibers that intersect the cells of the phloem parenchyma parenchyma, some of which differentiate into fibrous sclereids of various shapes. Between groups of fibers of hard bast, a part of the cells of the soft bast parenchyma is differentiated into sclereids, which are associated with fibers. In the outer part of the cortex, some cells of phelloderm and phelleme differentiate into sclereides, the sclerenchyma fibers lose most of the pore channels. A model of the phytomere integration system of a dicotyledon woody plant is considered, in which attention is paid to the axial and radial integration of cells and tissues due to the activity of the apex shoot and cambium, as well as the value of the auxin and potassium gradient. In the case of mechanical pressure of an elastic film on the stem of the shoot of P. nervirubens and in case of mechanical damage to the stem, its anatomical and morphological structure is determined, determined by the regeneration ability of the cambium and phellogen, their derivatives in relation to the applied impact. Dedifferentiation of sclerenchyma fibers by phelloderm cells and the formation of sclereids in callus parenchyma were noted.
Александров В. Г. Анатомия растений. М.: Высшая школа,1966. 431 с.
Александров В. Г., Савченко М. И., Деметрадзе Т. Я. О структурных изменениях тканей, возникающих под влиянием веществ, стимулирующих рост и развитие // Труды Бот. ин-та им. В.Л.Комарова. Сер. VII, вып. 2: Морфология и анатомия растений. М; Л.: Изд-во АН СССР, 1951. С. 99 − 111.
Барбер С. А. Биологическая доступность питательных веществ в почве. М.: Агропромиздат, 1988. 376 с.
Галеновская 3. В., Кондратьева-Мельвиль Е. А. Развитие верхушечной вегетативной почки дуба Quercus robur L. // Вестник Ленинградского государственного университета. 1971. № 9. С. 50 − 57.
Горшкова Т. А. Биогенез растительных волокон. М.: Наука, 2009. 260 с.
Дженсен У. Ботаническая гистохимия. М.: Мир, 1965. 377 с.
Еремин В. М. Анатомия коры видов рода Pinus (Pinaceae) Советского Союза // Ботанический журнал. 1978. Т. 63, № 5. С. 649 − 663.
Зеленин А. В. Геном растений // Вестник Российской академии наук. 2003. Т. 73, № 9. С. 797 – 806.
Зялалов А. А. О рециркуляции калия в стебле в связи с транспортом воды // Физиология растений. 1979. Т. 26, № 3. С. 579 – 583.
Зялалов А. А., Ганиев И. Г. Циркуляция калия в тепличных томатах в зависимости от субстрата возделывания // Агрохимия. 2000. № 11. С. 10 – 13.
Кларксон Д. Транспорт ионов и структура растительной клетки. М.: Мир, 1978. 368 с.
Косиченко Н. Е., Попов В. К., Ломовских Ю. А. Особенности анатомической структуры коры различных форм березы повислой // Лесоведение. 1980. № 6. С. 36 − 45.
Кулуев Б. Р., Сафиуллина М. Г., Князев А. В., Чемерис А. В. Морфологический анализ трансгенных растений табака, экспрессирующих ген PnEXPA3 тополя черного // Онтогенез. 2013. Т. 44, № 3. С. 166 – 173.
Мушенко Н. М., Тернавский А. М. Корневое питание растений. Киев: Выща школа, 1989. 204 с.
Полевой В. В. Физиология растений. М.: Высшая школа, 1989. 464 с.
Прозина М. Н. Ботаническая микротехника. М.: Высшая школа, 1960. 254 с.
Прокопьев Н. Я., Прокопьева А. Н. Выдающиеся анатомы и их вклад в мировую науку. Часть 3 // Педагогика высшей школы. 2016. № 1. С. 17 − 21.
Редько Г. И. Биология и культура тополей. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1975. 175 с.
Савельева Т. Е. Сравнительная анатомия коры молодых корней и побегов белой акации // Лесоведение. 1981. № I. С. 79 − 83.
Савельева Т. Е. Сравнительно-анатомические особенности коры корней и ветвей некоторых древесных пород // Научные доклады высшей школы. Биологические науки. 1972. № 8. С.64 − 68.
Самсонова Т. Н. Диагностические признаки строения коры некоторых видов кленов // Криминалистика и судебная экспертиза: Респ. межвузовский сб. науч. и науч.-метод. работ. 1975. Вып. 11. С. 329 − 341.
Снегирева А. В., Агеева М. В., Аменицкий С. И., Чернова Т. Е., Эбскамп М., Горшкова Т. А. Интрузивный рост волокон склеренхимы // Физиология растений. 2010. Т. 57, № 3. С. 361 – 375.
Степанов С. А. Анатомия стебля побега Populus nervirubens Alb. // Бюллетень Ботанического сада Саратовского государтвенного университета. 2016. Т. 14, № 2. С. 126 – 135.
Степанов С. А. Нервная система растений: гипотезы и факты // Бюллетень Ботанического сада Саратовского государтвенного университета. 2017. Т. 15, № 4. С. 31 − 56.
Степанов С. А. Склеренхима Populus nervirubens Alb.: полиморфизм клеток // Бюллетень Ботанического сада Саратовского государственного университета. 2018. Т. 16, № 2. С. 39 − 65.
Царев А. П. Сортоведение тополя. Воронеж : Изд-во ВГУ, 1986. 152 с.
Черепанов С. К. Сосудистые растения России и сопредельных государств (в пределах бывшего СССР). СПб.: Мир и семья, 1995. 992 с.
Эверт Р. Ф. Анатомия растений Эзау. Меристемы, клетки и ткани растений: строение, функции и развитие. М.: Бином, 2015. 600 с.
Эзау К. Анатомия семенных растений. Т. 1. М.: Мир, 1980. 218 с.
Эниня В. К. Образование вторичных лубяных волокон в бархате амурском // Наука − практике фармации: Сб. ст. науч. сотрудников фармац. фак. Риж. мед. инта. Рига: М-во здравоохранения ЛатвССР. Риж. мед. ин-т., 1974. С. 93 − 95.
Эсау К. Анатомия растений. М.: Мир, 1969. 564 с.
Юрин В. М., Соколик А. И., Кудряшов А. П. Регуляция ионного транспорта через мембраны растительных клеток. Минск: Навука i тэхнiка, 1991. 272 с.
Яценко-Хмелевский А. А. Краткий курс анатомии растений. М.: Высшая школа, 1961. 282 с.
Aloni R. Regeneration of phloem fibres round a wound: a new experimental system for studyng the physiology of fibre differentiation // Annals of Botany. 1976. Vol. 40, № 166. P. 395 − 396.
Aloni R., Gad Alexander E. Anatomy of the primary phloem fiber system in Pisum sativum // American Journal of Botany. 1982. Vol. 69, № 6. P. 979 − 984.
Armstrong M. G., Kirkby E. A. Estimation of potassiu recirculation in tomato plants by comparison of the rates of potassium and calcium accumulation in the tops with their fluxes in the xylem stream // Plant Physiology. 1979. Vol. 63. P. 1143 –1157.
Arnoff H. J. Three systems of biomineralization in plants with comments on the associated organic matrix // Biological Mineralization and Demineralization. Dahlem Workshop Reports. Vol 23. Berlin, Heidelberg: Springer, 1982. P. 199 − 218.
Bossinger G, Spokevicius A. V. Sector analysis reveals patterns of cambium differentiation in poplar stems // Journal of Experimental Botany. 2018. Vol. 69. P. 4339 – 4348.
Bourely J. Contribution a letude anatomique de L’Hibiscus cannabinus L. (Malvaceae). Origine, mise en place et. Viellisement des fibres phloemiennes // Re ue g n rale de botani ue. 1971. Vol. 78, № 923 − 925. P. 133 − 160.
Boyd D. W., Harris W. M., Murry L. Sclereid development in Camellia petioles // American Journal of Botany. 1982. Vol. 69, № 3. P. 339 − 347.
Brown C. I., Sax K. The influence of pressure on the differentiation of secondary tissues // American Journal of Botany. 1962. Vol. 49. P. 683 − 691.
Chouse A. K. M., Mohd Y. Intrusive growth in the phloem of Dalbergia // Bulletin of the Torrey Botanical Club. 1975. Vol. 102, № 1. P. 14 − 17.
Ernst O. Morphologische and physiologische alterung von Sekundarum Rindengewebe in Larix decidue Miel. // Vierteljahrsschrift der Naturforschenden Gesellschaft in Zürich. 1982. Bd. 127, № 2. S. 89 − 166.
Golinowski W. O. The anatomical of the common fir (Abies alba Mill.) bark. 2. Quantitative changes in bark tissues within the stem // Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 1971. Vol. 40, № 4. P. 569 − 598.
Harche M. Origine et differentiation des fibres, sousepiderrniques de la feuille d’Alfa (Stipa tenacissima L.) // Annales des sciences naturelles. Botanique et biologie g tale. Ser. 2. 1984. Vol. 6, № 4. P. 207 − 226.
Hauptli F. Die sklereidendifferenzierung in Pirus communis. Morphologische, anatomische und histochemische untersuchungen // Berichte der Schweizerischen Botanischen Gesellschaft. 1971. Bd. 81. S. 273 − 319.
Hinchee Maud A. W. The quantitative distribution of trichosclereids and raphide crystal cells in Monstera deliciosa // Botanical Gazette. 1983. Vol. 144, № 4. P. 513 − 518.
Hiroki N., Hiroshi S., Hiroshi H. Development and structure of the phloem fibers in the secondary phloem of Populus euramericana // Journal of the Japanese Wood Research Society. 1977. Vol. 23, № 6. P. 267 − 272.
Imagawa H. Study on the seasonal development of the secondary phloem in Larix leptolepis // Research Bulletins of the College Experiment Forests. 1981. Vol. 38, № 1. P. 31 − 44.
Jansson S., Douglas C. J. Populus: a model system for plant biology // Annual Review of Plant Biology. 2007. Vol. 58. P. 435 – 458.
Juniper B.E., Lawton June R., Harris P. J. Cellular organelles and cell-wall formation in fibres from the flowering stem of Lolium temulentum L. // New Phytologist. 1981. Vol. 89, № 4. P. 609 − 619.
Khan S., Khan M. J. H. The extent of apical growth of the bast fibres over their mother initials in some trees of Myrtaceae // Bulletin − Societe Botanique de France. 1983. Vol. 130, № 2. P. 103 − 107.
Lev-Yadun S. Intrusive growth − the plant analog to dendrite and axon growth in animals // New Phytologist. 2001. Vol. 150. P. 508 − 512.
Lev-Yadun S. Plant fibers: initiation, growth, model plants, and open questions // Russian Journal of Plant Physiology. 2010. Vol. 57, № 3. С. 305 − 315.
Lintilhac P. M., Vesecky T. B. Mechanical stress and cell wall orientation in plants. 2. The applications of controlled directional stress to growing plants with a discussion of the nature of the wound reaction // American Journal of Botany. 1984. Vol. 68. P. 1222 − 1230.
Mia A. J. Fine structure of the secondary walls of sclereids of Rauwolfia serpentina // Texas Journal of Science. 1985. Vol. 37, № 4. P. 359 − 369.
Parameswaran N. Some remarks on the nomenclature of fibres, sclereids and fibre-sclereids in the secondary phloem of trees // JAWA Bulletin. 1980. Vol. 1, № 3. P. 130 − 132.
Parameswaran N., Schltze R. Fine structure of chambered Crystalliferous cells in the Bark of Acacia senegal // Zeitschrift für Pflanzenphysiologie. 1974. Vol. 71, № 1. P. 90 − 93.
Peraira dos Santos A. V. Origem e deselvolvimento de esclereideos foliares em Erythroxylum suberosum St. Hil // Ciencia e Cultura. 1976. Vol. 28, № 10. P. 1204 − 1208.
Pizzolato T. D., Heimsch C. Ontogeny of the protophloem fibers and secondary xylem fibers within stem of Coleus. 1. A light microscope study // Canadian Journal of Botany. 1975. Vol. 53. P. 1658 − 1671.
Rao A. N. Foliar Sclereids in Scorodocarpus borueensis (Kulim) // Malaysia Forest. 1975. Vol. 38, № 3. P. 184 − 186.
Rao A. R., Rao C. K. Root sclereids of Gnetum ula Brongn // Proceedings of the Indian National Science Academy, Part BB. 1971. Vol. 37, № 4. P. 150 − 162.
Rao A. R., Rao C. R. Root Sclereids of Syzygium cumini L. Skeeds // Proceedings of the Indian National Science Academy, Part BB. 1972. Vol. 75, № 4. P. 177 − 190.
Rodriguez A., Albuerne M., Sauchez-Tamez R. Histology hasel (Corylus avellana L.) shoots in relation to rooting // Phyton. 1986. Vol. 46, № 1. P. 27 − 31.
Sangster A. G., Parry D. W. Ultrastructure of silica deposits in higher plants // Silicon and Siliceous Structures in Biological Systems. New York: Springer-Verlag, 1981. P. 383 − 407.
Sauter J. J. Photosynthate allocation to the vascular cambium: facts and problems // Cell and Molecular Biology of Wood Formation. Oxford: BIOS Scientific, 2000. P. 71 − 83.
Scurfield G., Michell A. J., Silva S. R. Crystals in woody stems // Botanical Journal of the Linnean Society. 1973. Vol. 66, № 4. P. 277 − 289.
Snegireva A., Chernova T., Ageeva M., Lev-Yadun S., Gorshkova T. Intrusive growth of primary and secondary phloem fibres in hemp stem determines fibrebundle formation and structure // AoB Plants. 2015. Vol. 7. P. plv061.
Teichman von I. Reinterpretation of the pericarp of Rhus lancea (Anacardiaceae) // South African Journal of Botany. 1989. Vol. 55, № 3. P. 383 − 384.
Thompson D. P., Heimsch C. A striking example of intrusive growth in protophloem fibers of Реlargonium // Bulletin of the Torrey Botanical Club. 1975. Vol. 102, № 2. P. 54 − 55.
Wilbur F. H., Riopel J. L. The role of cell interaction in the growth and differentiation of Pelargonium hortorum cells in vitro. 2. Cell interaction and differentiation // Botanical Gazette. 1971. Vol. 132, № 3. P. 193 − 202.
